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不同抗發炎藥物於糖尿病動物模式之療效評估

為了解決power adaptor中文的問題，作者李宜蓁 這樣論述：

誌謝中文摘要 i英文摘要 iii目錄 vi圖目錄 ix表目錄 xii1.緒論 11.1糖尿病簡介 11.1.1糖尿病分型及流行病學 11.1.2糖尿病的臨床症狀及診斷標準 21.1.3糖尿病的風險因子及併發症 21.2糖尿病病程發展與發炎間的關係 21.2.1發炎可能導致糖尿病發生的研究證據 21.2.2發炎機制與第一型糖尿病的關聯性 31.2.3發炎機制與第二型糖尿病的關聯性 41.3類鐸受體相關訊息傳遞與糖尿病進程發展的關聯性 61.3.1類鐸受體及其下游訊息傳遞途徑 61.3.2類鐸受體及其

下游分子在第一型糖尿病中扮演的角色 91.3.3類鐸受體及其下游分子在第二型糖尿病中扮演的角色 91.4類泛素化作用機制與糖尿病進程發展的關聯性 111.4.1類泛素化(NEDDylation)機制介紹 111.4.2類泛素化機制在第一型糖尿病中扮演的角色 131.4.3類泛素化機制在第二型糖尿病中扮演的角色 141.5新型糖尿病藥物開發策略 151.5.1髓系分化因子2 (MD2) 小分子阻斷劑- TLR4INC34 161.5.2髓系分化因子2 (MD2) 短鏈胜肽阻斷劑- C70PLY4 171.5.3類泛素化活化酵素(NAE)抑制劑

-MLN4924 181.6常用於糖尿病研究的動物模式 191.6.1第一型糖尿病小鼠模型 201.6.2第二型糖尿病小鼠模型 232.研究目的 253.材料與方法 263.1實驗材料 263.1.1實驗動物來源 263.1.2動物飼料 263.2尋找藥物溶劑配方 263.3動物實驗設計、分組及執行 273.3.1二十八天C69PLY4藥物腹腔注射毒性及安全性試驗(圖十六) 283.3.1.1動物模式建立及飼養 283.3.1.2實驗動物分組及給藥方式 283.3.1.3毒性及安全性評估指標 293.3.

2利用第一型糖尿病動物模式(HFD/STZ小鼠)進行療效評估(圖十七) 293.3.2.1動物模式建立及飼養 293.3.2.2實驗動物分組及給藥方式 303.3.2.3療效評估指標 313.3.3利用第二型糖尿病動物模式(DB小鼠)進行療效評估(圖十八) 323.3.3.1動物模式建立及飼養 323.3.3.2實驗動物分組及給藥方式 323.3.3.3療效評估指標 323.4樣品採集與評估指標相關實驗方法 333.4.1臨床觀察與體重量測 333.4.2尿液樣品採集 333.4.3血液及血清樣品採集 333.4.4以人用

血糖機量測小鼠血糖值 343.4.5量測尿中肌酸酐及微量白蛋白含量 353.4.6分析血中血球的分類及數量 353.4.7分析血中糖化血色素佔總血紅素的比例 363.4.8量測血清生化指標 373.4.9量測血清中胰島素濃度 393.4.10量測血清中C胜肽濃度 403.4.11分析血清中發炎相關因子濃度 413.5組織病理檢查與免疫組織化學染色及定量 423.5.1組織器官樣品採集及固定 423.5.2組織粗修、石蠟包埋及組織切片 433.5.3蘇木素-伊紅染色法及糖原染色(過碘酸希夫染色) 433.5.4免疫組織化學染

色 443.5.5病理判讀及嚴重度分級 453.5.6量化胰島素表現量及評估????細胞活性 453.6統計分析 464.結果 474.1 可有效溶解C34、C69PLY4及MLN4924之溶劑配方 474.2二十八天C69PLY4藥物腹腔注射毒性及安全性試驗 474.2.1經不同劑量C69PLY4投予後的動物臨床觀察與體重量測 474.2.2動物經不同劑量C69PLY4投予後的血液病理分析 484.2.3動物經不同劑量C69PLY4投予後的血清生化分析 484.2.4動物經不同劑量C69PLY4投予後的組織病理觀察 484.3

C34、C69PLY4、MLN4924於第一型糖尿病動物模式(HFD/STZ小鼠)之療效評估 504.3.1第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的臨床觀察與體重量測 504.3.2第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血糖、糖化血色素及胰島素變化 514.3.3第一型糖尿病動物經C34及C69PLY4治療後，胰臟組織中????細胞的活性變化 524.3.4第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血清及尿液生化分析 534.3.5第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療

後的組織病理觀察 544.3.6第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血中發炎相關因子分析 564.4 C34、C69PLY4、MLN4924於第二型糖尿病動物模式(DB小鼠)之療效評估 574.4.1第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的臨床觀察與體重量測 574.4.2第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血糖、糖化血色素及胰島素變化 574.4.3第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血清及尿液生化分析 594.4.4第二型糖尿病動物經C34、C69

PLY4及MLN4924治療後的組織病理觀察 604.4.5第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血中發炎相關因子分析 615.討論 636.結論 727.參考文獻 738.圖 1029.表 16910.附錄 19710.1附錄一、小鼠血液病理正常參考範圍 19710.2附錄二、小鼠血液白血球種類及佔比正常參考範圍 19810.3附錄三、小鼠血液生化正常參考範圍 199

Poly(ADP-ribose) Polymerase-1調控巨噬細胞NLRP3發炎小體活化及紫外光B誘發角質細胞發炎反應之角色

為了解決power adaptor中文的問題，作者邱鈴雅 這樣論述：

Poly(ADP-ribose) polymerase-1 (PARP-1)是廣為熟知的修復去氧核醣核酸(DNA)起始酵素，因為它可以催化二磷酸腺苷核糖的聚合反應，修飾並調控DNA修復相關的酵素。更多研究逐漸發現，PARP-1在許多疾病模式中會調控發炎反應，因此我們致力於研究PARP-1如何調控NLRP3發炎小體(inflammasome)活化以及紫外光B誘發之發炎反應。位於胞內的核苷酸結合寡聚化結構域樣受體NLRP3，由於它可以偵測到廣泛的病原體入侵以及源自於細胞損傷釋出的危險訊號因子，進而啟動下游的免疫反應，是很重要的先天免疫反應受體。我們的研究發現，在小鼠骨髓分化巨噬細胞中，NLRP3

刺激劑誘發的caspase-1活化及白介素-1貝他(IL-1)釋放，都受到PARP-1基因缺損或是PARP-1抑制劑所抑制。然而，活化NLRP3發炎小體的第一步訊息並未受到PARP-1基因缺失影響。除此之外，三磷酸腺苷(ATP)誘發之胞內氧化自由基(ROS)，在PARP-1缺損之小鼠骨髓誘發巨噬細胞產生的較少，因而導致發炎小體複合體聚集較少。PARP-1會在ATP的刺激下從細胞核內轉移到細胞質，去催化NLRP3的聚(ADP-核糖基)化(PARylation)修飾，進而促進NLRP3發炎小體複合體的組成。PARP-1同時也做為NLRP3和TXNIP蛋白的橋樑，並參與在NLRP3/TXNIP複合

體的生成，因此促進發炎小體的活化。我們的研究找到PARP-1調控NLRP3發炎小體活化的嶄新機制，因此PARP-1有潛力成為發展治療IL-1相關疾病的藥物標的。 紫外光會損傷皮膚，造成曬傷、發炎以及相關的皮膚疾病，在第二部分的研究中，我們想了解PARP-1如何調控紫外光B造成的皮膚損傷以及和表皮生長因子受體(EGFR)間的交互作用和其相關的發炎反應。我們發現PARP-1的基因缺損會惡化小鼠對於紫外光B誘發之發炎反應、水分散失以及背部皮膚損傷。在人類原發性角質細胞中，紫外光B會活化PARP-1並在PARP-1基因默化時造成更嚴重的DNA損傷。而紫外光B誘發之環氧合酶-2(COX-2)和基質金

屬蛋白酶-1(MMP-1)的表現，會受到PARP-1基因靜默或其抑制劑所抑制，然而，腫瘤壞死因子阿法(TNF-和白介素-8 (IL-8)的生成卻因此而增強。由於EGFR基因靜默或是用其抑制劑gefitinib會抑制紫外光B誘發之COX-2、TNF-以及IL-8的表現量，顯示EGFR經由旁分泌的活化，會進而影響紫外光B誘發之發炎反應。西方墨點法的結果顯示，抑制PARP-1會降低紫外光B引發之EGFR和p38 MAPK活化，而p38 MAPK抑制劑會明顯抑制紫外光B誘發之發炎反應。值得注意的是，PARP-1或是EGFR的基因靜默都會降低紫外光B誘發之ROS生成，而抗氧化劑NAC會降低紫外光B

引發的EGFR-p38 MAPK訊息傳遞和PARP-1活化。以上結果顯示，在EGFR、PARP-1和ROS之間有相互調控的迴路。因此，紫外光B的刺激下，PARP-1不只是參與DNA修復的功能，同時也會經由EGFR活化及ROS生成間的交互作用，造成下游p38 MAPK的訊息傳遞，進而調控角質細胞的發炎反應。